猪萎缩性鼻炎(Atrophic rhinitis of swine，AR)又称猪传染性萎缩性鼻炎(Infections atrophic rhinitis of swine，IAR)，是由支气管败血波氏杆菌(Bordetellabronchiseptica，Bb)或产毒素多杀性巴氏杆菌(Pasteurellamultocida，Pm)引起的一种慢性接触性呼吸道传染病^[1]。本病以鼻塞、打喷嚏、流鼻血、咳嗽、呼吸不畅、颜面变形或鼻梁歪斜为主要特征。哺乳仔猪感染本病后，除主要特征外，还可以引起全身钙、磷代谢障碍，致使仔猪发育迟缓，饲料利用率降低，有时伴发急、慢性支气管炎，导致仔猪死亡，从而给养殖业带来严重的经济损失^[2-4]。

AR于1830年由德国学者Frangue首次报道。近几十年来，随着集约化养猪业的不断发展以及猪的引种和频繁调运，本病己经广泛分布于世界各养猪业发达地区^[5]。2003年－2006年，贵州省6个养猪场先后出现了疑似AR的病例，为查明病因，采集这些感染猪群鼻腔棉拭子156份进行分离，获得了34株疑似Bb分离菌。本试验对分离菌进行了形态结构、染色特性、培养性状和生化特性等方面的生物学测定，同时针对Bb FlaA基因合成一对特异引物进行PCR鉴定及药敏试验，现将结果报告如下。

1　材料与方法

1.1　材料

1.1.1　菌株来源　34株疑似Bb分离菌(编号为B1、B2、……、B34)，分离自表现AR临床症状的6个养殖场猪群；多杀性巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、变形杆菌和枯草芽孢杆菌，为贵州大学动物科学学院实验室冻干保存菌株。

1.1.2　主要试剂　细菌培养基、生化反应试验管、药敏纸片购自杭州微生物试剂有限公司；PCR试剂、200 bp Marker、EB为上海生工生物工程技术服务有限公司产品。

1.2　方法

1.2.1　形态结构与染色特性测定　取34株疑似Bb分离物接种10 g/L葡萄糖麦康凯培养基，挑取单个菌落染色镜检，观察细菌分离物的形态结构；采用压滴法、硝酸银^[6]和节思明^[7]染色法分别观察细菌的运动性、鞭毛和荚膜。

1.2.2　培养性状与生化特性测定　取上述细菌分离菌分别接种10 g/L葡萄糖改良麦康凯琼脂平板、鲜血琼脂平板、胰蛋白胨大豆琼脂平板及普通营养琼脂平板等，同时接种各种生化反应管，置37 ℃温箱培养24 h～48 h，观察结果。

1.2.3　PCR鉴定

1.2.3.1　引物设计　参照Hozbor D等^[8]报道，针对Bb FlaA基因上游序列选择合成1对引物，即Fla1：5′-TGGCGCCTGCCCTAT-3′和Fla2：5′-AGGCTCCCAAGAGAGAAAGGCTT-3′，其理论扩增幅度为237 bp，由上海生工生物工程技术有限公司合成。

1.2.3.2　PCR扩增　将分离菌分别接种到胰蛋白胨大豆琼脂平板上，37 ℃培养24 h，挑取单个菌落，放入2 mL离心管，以每50 μL双蒸水一个菌落计，混匀后100 ℃煮沸10 min，冰块中冷却10 min,4 ℃10 000 r/min离心10 min，取上清液作为模板。PCR反应体系为30 μL：双蒸水21.5 μL、10×buffer缓冲液(含15 mmol/L MgCl₂) 3 μL、TaqDNA聚合酶1 μL、dNTP0.5 μL、引物Fla1和Fla2各(10 μmo/L) 1.5 μL、模板1 μL。PCR反应条件为：95 ℃5 min；94 ℃ 30 s,56 ℃30 s,72 ℃40 s,35个循环；最后72 ℃10 min。取PCR产物5 μL，于20 g/L琼脂糖凝胶电泳，EB染色，凝胶成像系统观察。

1.2.3.3　PCR特异性与敏感性试验　按上述方法分别提取多杀性巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、奇异变形杆菌和枯草芽孢杆菌的DNA模板进行PCR反应，检测PCR特异性；Bb菌株菌液DNA为模板经10倍连续稀释后，取各浓度进行PCR扩增，检测PCR的敏感度，同时按照常规方法进行细菌计数。

1.2.4　药物敏感性试验　按常规纸片法测定Bb分离菌对12种抗生素的敏感性。

2　结果

2.1　形态结构与染色特性

经抺片、染色镜检，34株细菌分离物均为G^－的短小杆菌，多呈单或成双排列，少数成短链状，不形成芽胞；压滴法可观察到细菌具有运动性，经硝酸银染色后，可见细菌有周鞭毛；节思明染色后发现细菌分离物有荚膜。

2.2　培养性状和生化鉴定

在10 g/L葡萄糖改良麦康凯琼脂平板，34株细菌分离物均能耐受5 g/L胆盐抑制剂，发育为无色或茶黄色菌落；在鲜血琼脂平板上，所有菌均呈β溶血；在胰蛋白胨大豆琼脂平板上，所有菌呈无色、大小不等的菌落；在普通营养琼脂平板上，所有菌于24 h后可见针尖样小菌落，48 h即获得茂盛生长。所有分离物不能分解碳水化合物，即葡萄糖、乳糖、麦芽糖、甘露醇、蔗糖、木糖、果糖试验均为阴性，而过氧化氢，尿素酶、硫化氢，石蕊牛乳等试验均为阳性，能利用柠檬酸盐，还原硝酸盐，吲哚及MR反应阴性。

根据细菌分离菌的形态结构、染色特性、培养性状和生化鉴定等结果，34株分离菌均符合Bb的生物学特征。

2.3　PCR鉴定

经Fla1/Fla2引物进行PCR反应，34株分离菌均扩增出一条约为240 bp的特异DNA条带(图1和图2)，与引物设计的预期片段大小一致。

1～17.B1～B17；M.200 bp标准；N.空白对照

1-17.B1-B17；M.200 bp Marker；N.Blank control　

图1　分离菌株B1～B17的PCR检测结果

Fig.1　The PCR results of B1-B17 isolates

18～34.B18～B34；N.空白对照；M.200 bp标准

18-34.B18-B34；N.Blank control；M.200 bp Marker

图2　分离菌株B18～B34的PCR检测结果

Fig.2　The PCR results of B18-B34 isolates

2.4　PCR特异性与敏感性试验结果

分别提取Bb、多杀性巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、铜绿假单胞菌、变形杆菌和大肠埃希菌等猪鼻腔和肺组织中常见细菌的DNA样本进行PCR，结果只有Bb扩增出一条大小约为240 bp的特异DNA条带，其他菌均未扩增出任何DNA条带(图3)。

M.200 bp标准；N.空白对照；1.多杀性巴氏杆菌；2.金黄色葡萄球菌；3.枯草芽孢杆菌；4.铜绿假单胞菌；

5.大肠埃希菌；6.Bb菌株；7.变形杆菌　

M.200 bp标准；N.空白对照；1.10^－2；2.10^－3；3.10^－4；4.10^－5；5.10^－6；6.B.bronchiseptica；7.P.mirabillis

图3　PCR特异性检测结果

Fig.3　Specificity of PCR results

将Bb分离株不同稀释度即10^－2、10^－3、10^－4、10^－5和10^－6菌液进行PCR扩增，结果稀释度为10^－4的菌液在PCR扩增后可出现明显的DNA条带(图4)。根据含菌量测定结果和文献资料^[9]推算，10^－4菌液的DNA含量为0.64 pg，即该PCR的最小检出量为0.64 pg。

M.200 bp Marher；N.Blank control；1.10^－2；2.10^－3；3.10^－4；4.10^－5；5.10^－6

M.200 bp Marher；N.Blank control；1.P.multocida；2.S.aureus；3.B.subtilis；4.P.aeruginosa；5.E.coli；

图4　PCR敏感性检测结果

Fig.4　Sensitivity of PCR results

2.3　药敏试验

34株Bb分离物对12种抗菌素的敏感性见表1。

表1　34株细菌分离物的药敏试验结果

Table 1　The drug sensitivity test results of 34bacterial isolates

抗菌药物 Antimicrobial drugs	纸片药物含量 /(μg·片－1) Drug concentration	判定标准 Criteria
		耐药 Drug resistance	中敏 Middle sensitive	高敏 High sensitive
先锋霉素 VPioneer adriamycin V	30	≤14	15-17	≥18
多黏菌素 BPolymyxin B	300u	≤7	8-10	≥11
丙氟哌酸 C Norfloxacin	5	≤15	16-20	≥21
氟哌酸 Norfloxacin	10	≤12	13-16	≥17
利福平 Rifanpicin	5	≤16	17-19	≥20
青霉素 Penicillin	10u	≤28	―	≥29
卡那霉素 Kanamycin	30	≤13	14-17	≥18
庆大霉素 Gentamicin	10	≤12	13-14	≥15
四环素 Tetracycline	30	≤14	15-18	≥19
红霉素 Erythromycin	10	≤13	14-22	≥23
氯洁霉素 Chlorine lincomycin	2	≤14	15-20	≥21
链霉素 Streptomycin	10	≤11	12-14	≥15

从表1可见，34株Bb分离株对多黏素B、丙氟哌酸、氟哌酸、卡那霉素和庆大霉素表现高度敏感，而对先锋霉素、利福平、青霉素、四环素、红霉素、氯洁霉素和链霉素表现不同程度耐药性。

3　讨论

从表现AR临床症状猪群中采取156份鼻腔棉拭子进行细菌学的分离鉴定，结果分离出34株Bb，分离率为21.8%。

根据Bb FlaA基因上游序列选择合成一对特异性引物(Fla1/Fla2)，对34株分离株进行PCR鉴定，结果34株均扩增出一条大小约为240 bp的特异DNA条带，与传统的生理生化鉴定结果完全一致。且最小检出量为0.64 pg；对猪鼻腔和肺组织中常见的多杀性巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、变形杆菌和枯草芽胞杆菌均呈阴性反应；说明该PCR方法具有较高的特异性和敏感性，与传统的细菌学鉴定方法比较，具有特异、敏感、简便、快速等特点，可用于AR病原(Bb)的临床鉴定。

临床上根据药物敏感性试验，可以给生产实践提供用药依据。本试验中34株Bb分离株对多黏霉素B、丙氟哌酸、氟哌酸、卡那霉素和庆大霉素表现高度敏感，对链霉素等表现耐药；而边传周等^[10]报道对庆大霉素表现耐药；韩洪伟等^[11]报道对链霉素表现高度敏感。其差异性表现在细菌对抗生素很容易产生不同程度的耐药性，尤其是长时间应用抗生素的猪，因此建议临床上交叉使用药物。为了更好地控制本病，应采用综合防控措施，即疫苗接种为主，再辅以药物防治，同时加强饲养管理。